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这是健康人肝星状细胞最核心的基础科研应用。理解“静息→激活"的转化过程,是开发抗纤维化早期干预策略的前提。
经典激活通路研究:用TGF-β1(2-5 ng/mL)、PDGF-BB(10-20 ng/mL)、瘦素(Leptin)、血管紧张素II等刺激静息态HHSCs,系统研究TGF-β/Smad、PDGF/PI3K-AKT、Wnt/β-catenin、Hedgehog、YAP/TAZ等信号通路的时序性激活。
代谢应激诱导激活(NASH相关):用游离脂肪酸(棕榈酸、油酸,100-400 μM)处理健康HHSCs,模拟非酒精性脂肪性肝炎(NASH)中的脂毒性环境,研究内质网应激(ER stress)、氧化应激(ROS)、线粒体功能障碍如何驱动星状细胞激活。这是当前NASH药物研发的热点。
“肠-肝轴"与微生物信号:用LPS(脂多糖,通过TLR4)、细菌DNA(通过TLR9)或次级胆汁酸刺激健康HHSCs,研究肠道菌群代谢产物如何通过门静脉到达肝脏,激活星状细胞并启动纤维化级联反应。
表观遗传调控:研究DNA甲基化、组蛋白修饰(如HDAC、HAT)和microRNA(如miR-21、miR-29)在静息态与激活态HHSCs中的差异,寻找可逆的表观遗传靶点。
由于健康细胞代表“零点"状态,它们是预防性药物筛选和促静息化(逆转)药物评价理想的模型。
模型:在TGF-β1或PDGF-BB刺激的同时加入候选化合物。
评价指标:检测α-SMA、COL1A1/3A1、纤连蛋白(FN1)、TIMP1的mRNA和蛋白表达是否被抑制。
应用:筛选TGF-β受体激酶抑制剂(如Galunisertib)、整合素αvβ6拮抗剂、PPAR-γ激动剂(如吡格列酮)、FXR激动剂(如奥贝胆酸)、ASK1抑制剂(如Selonsertib)等。
模型:先用TGF-β1处理健康HHSCs 3-5天,使其充分激活(α-SMA↑,脂滴↓),再加入候选药物处理数天(通常3-7天)。
逆转的评价标准(比单纯抑制更具临床转化价值):
α-SMA、COL1A1表达显著下调。
脂滴重新积累(油红O染色或维生素A自发荧光恢复)——这是“静息态恢复"的最直观标志。
胶原凝胶收缩能力下降。
增殖能力下降(CCK-8或EdU)。
阳性对照:全反式维甲酸(ATRA)和罗格列酮(PPAR-γ激动剂)已知可部分逆转激活,可作为体系验证的参考。
临床意义:目前全球尚无获批的抗肝纤维化药物,此模型是临床前药效学评价的关键环节。
随着NASH成为肝纤维化的主要病因,健康HHSCs在代谢炎症研究中的应用急剧增加。
脂毒性模型:如前所述,用棕榈酸/油酸处理健康HHSCs,检测促炎细胞因子(IL-6、IL-8、CCL2/MCP-1) 的分泌。
免疫细胞-星状细胞对话:将健康HHSCs与Kupffer细胞(肝脏巨噬细胞) 或巨噬细胞系(THP-1分化) 共培养,研究在LPS或FFA刺激下,两者“对话"如何放大炎症信号(如TNF-α、IL-1β)并促进星状细胞激活。此模型用于筛选双重靶向炎症+纤维化的候选药物。
脂肪因子/肝因子:研究脂联素(Adiponectin)、成纤维细胞生长因子21(FGF21)、FGF19等对健康HHSCs激活的调控作用。
静息态的HHSCs是肝脏微环境中“友善"的基质细胞,对肝细胞稳态和再生至关重要。
旁分泌支持作用:健康HHSCs分泌HGF(肝细胞生长因子) 和EGF(表皮生长因子),是肝细胞增殖的重要支持信号。利用健康HHSCs的条件培养基处理原代肝细胞或肝细胞系(如HepG2),研究其对肝细胞白蛋白分泌、尿素合成、CYP450酶活性的维持作用。
肝窦微环境维护:与肝窦内皮细胞(LSECs) 共培养,研究健康HHSCs如何通过维持基底膜样基质(IV型胶原、层粘连蛋白)来保护LSECs的窗孔结构和功能,防止肝窦毛细血管化(这是门静脉高压的早期事件)。
传统的2D硬塑料培养会迫使健康HHSCs“伪激活",近年来3D模型在更真实模拟体内微环境方面取得突破。
肝类器官-星状细胞共培养:将健康HHSCs与肝类器官(由iPSC或成体肝干细胞分化) 共包埋于Matrigel或胶原中。
应用:在共培养体系中加入TGF-β1或酒精/FFA,构建体外肝纤维化类器官模型,用于更接近人体生理的药物筛选和机制研究。
优势:包含了肝细胞、星状细胞、甚至Kupffer细胞的相互作用,能反映细胞间的立体对话。
脱细胞肝支架(dECM)再细胞化:将健康HHSCs和肝细胞接种于脱细胞肝支架中,在流动培养(生物反应器)下构建具有组织结构和血流动力学的生物人工肝雏形,用于研究纤维化逆转和组织重塑。
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